Équipe
Physiologie et Physiopathologie Spermatique

Dpt: Environnement, Reproduction, Infections, Cancer

Nos activités de recherche

Le potentiel de fécondation des spermatozoïdes repose principalement sur leur bonne progression dans le tractus génital féminin et leur activation fonctionnelle qui met en jeu des cascades de signalisation intracellulaire déclenchées par les ions calcium et bicarbonate. Dans ce contexte, notre programme de recherche vise à mieux définir les mécanismes moléculaires et cellulaires qui régissent l'assemblage et la structure du flagelle des spermatozoïdes chez les mammifères, par comparaison aux cils et aux flagelles des organismes inférieurs. Nous étudions également les voies du métabolisme énergétique et de la signalisation intracellulaire impliquées dans la maturation fonctionnelle des spermatozoïdes au cours de leur transit dans les voies génitales masculines et féminines. De manière importante, en collaboration avec des centres de biologie de la reproduction et de génétique, nous étudions les causes génétiques et les mécanismes physiopathologiques associés à l'asthénozoospermie, dans le cadre d’infertilité isolée, de ciliopathies ou et pathologies syndromiques. Au total, notre programme de recherche vise à mieux définir les mécanismes régulant la capacité fécondante des spermatozoïdes et à améliorer la prise en charge de la fertilité masculine par le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques et contraceptives.
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Aminata TOURÉ

Chef d’équipe

04 57 04 13 18

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Nos axes de recherche

Définition des mécanismes moléculaires et cellulaires impliqués dans l'assemblage et la structure du flagelle des spermatozoïdes par analyse comparative avec les cils et les flagelles au cours de l’évolution.

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Caractérisation des voies métaboliques énergétiques et des voies de signalisation activées par les canaux ioniques transmembranaires et les récepteurs au cours de la mobilité et de l'activation fonctionnelle des spermatozoïdes.

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Caractérisation des causes génétiques et des mécanismes physiopathologiques associés à l'infertilité masculine pour l’élaboration de stratégies thérapeutiques et contraceptives.

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Nos publications majeures

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DNALI1 interacts with the MEIG1/PACRG complex within the manchette and is required for proper sperm flagellum assembly in mice

Yap YT, Li W, Huang Q, Zhou Q, Zhang D, Sheng Y, Mladenovic-Lucas L, Yee…

Elife 2023 Jul 10;26(8):107354. doi:10.7554/eLife.79620.

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Identification of IQCH as a calmodulin-associated protein required for sperm motility in humans

Cavarocchi E, Sayou C, Lorès P, Cazin C, Stouvenel L, El Khouri E, Coutton C,…

iScience 2023 Jul 10;26(8):107354. doi:10.1016/j.isci.2023.107354.

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Sperm Ion Transporters and Channels in Human Asthenozoospermia: Genetic Etiology, Lessons from Animal Models, and Clinical Perspectives

Cavarocchi E, Whitfield M, Saez F, Touré A.

Int J Mol Sci 2022 Apr 1;23(7):3926.

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The sodium/proton exchanger SLC9C1 (sNHE) is essential for human sperm motility and fertility

Cavarocchi E, Whitfield M, Chargui A, Stouvenel L, Lorès P, Coutton C, Arnoult C, Santulli…

Clin Genet 2021 May;99(5):684-693

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Tubulin glycylation controls axonemal dynein activity, flagellar beat, and male fertility

Gadadhar S, Alvarez Viar G, Hansen JN, Gong A, Kostarev A, Ialy-Radio C, Leboucher S,…

Science 2021 Jan 8;371(6525):pii: eabd4914.

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Importance of SLC26 Transmembrane Anion Exchangers in Sperm Post- testicular Maturation and Fertilization Potential

Touré A.

Front Cell Dev Biol 2019 Oct 18;7:230

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Mutations in DNAH17, Encoding a Sperm-Specific Axonemal Outer Dynein Arm Heavy Chain, Cause Isolated Male Infertility Due to Asthenozoospermia

Whitfield M, Thomas L, Bequignon E, Schmitt A, Stouvenel L, Montantin G, Tissier S, Duquesnoy…

Am J Hum Genet 2019 Jul 3;105(1):198-212.

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Mutations in TTC29, Encoding an Evolutionarily Conserved Axonemal Protein, Result in Asthenozoospermia and Male Infertility

Lorès P, Dacheux D, Kherraf ZE, Nsota Mbango JF, Coutton C, Stouvenel L, Ialy-Radio C,…

Am J Hum Genet 2019 Dec 5;105(6):1148-1167.

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Slc26a3 deficiency is associated with epididymis dysplasia and impaired sperm fertilization potential in the mouse

El Khouri E, Whitfield M, Stouvenel L, Kini A, Riederer B, Lores P,Roemermann D, di…

Mol Reprod Dev 2018 Aug;85(8-9):682-695.

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Deletion of MgcRacGAP in the male germ cells impairs spermatogenesis and causes male sterility in the mouse

Lorès P, Vernet N, Kurosaki T, Van de Putte T, Huylebroeck D, Hikida M, Gacon…

Dev Biol 2014 Feb 15;386(2):419-27.

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Nos activités en images

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Nos collaborations

  • AMSELEM Serge & LEGENDRE Marie, AP-HP Trousseau. France
  • BONHIVERS Mélanie, Bordeaux University. France
  • DURAND Bénédicte, Lyon University. France
  • FAUVARQUE Marie-Odile & BARETTE Caroline, CEA Grenoble. France
  • HENNEBICQ Sylviane, CHU Grenoble Alpes. France
  • PATRAT Catherine & DULIOUST Emmanuel, AP-HP Cochin. France
  • PRIP-BUUS Carina, Institut Cochin, Paris. France
  • RAY Pierre, CHU Grenoble Alpes. France
  • SAEZ Fabrice, Gred Clermont-Ferrand. France
  • SEIDLER Ursula, Hannover Medical School. Germany
  • SIRONEN Anu, University College London, UK
  • ZHANG Zhibing, Wayne State University. USA

Nos technologies

  • Biochimie
  • Biologie cellulaire
  • Biologie moléculaire
  • Histologie & Immunohistochimie
  • Imagerie cellulaire : microscopie épifluorescence, super résolution
  • Imagerie ultrastructurale : microscopie électronique à transmission et à balayage
  • Protéomique
  • Analyses spermatiques : spermogramme, spermocytogramme